用 途：用于大鼠血清、血漿及相關液體樣本中胃動素（MTL）測定。
工作原理
本試劑盒采用的是生物素雙抗體夾心酶聯免疫吸附法（ELISA）測定樣品中大鼠胃動素（MTL）水平。向預先包被了大鼠胃動素（MTL）單克隆抗體的酶標孔中加入大鼠胃動素（MTL），溫育；溫育后，加入生物素標記的抗胃動素（MTL）抗體。再與鏈霉親和素-HRP結合，形成免疫復合物，再經過溫育和洗滌，去除未結合的酶，然后加入底物A、B，產生藍色，并在酸的作用下轉化成最終的黃色。顏色的深淺與樣品中大鼠胃動素（MTL）的濃度呈正相關。
試劑盒組成

需要而未提供的試劑和器材
1．37℃恒溫箱。
2．標準規格酶標儀。
3．精密移液器及一次性吸頭
4．蒸餾水，
5．一次性試管
6．吸水紙
注意事項
1．從2-8℃取出的試劑盒，在開啟試劑盒之前要室溫平衡至少30分鐘。酶標包被板開封后如未用完，板條應裝入密封袋中保存。
2．各步加樣均應使用加樣器，并經常校對其準確性，以避免試驗誤差
3．嚴格按照說明書的操作進行，試驗結果判定必須以酶標儀讀數為準.
4．為避免交叉污染，要避免重復使用手中的吸頭和封板膜。
5．不用的其它試劑應包裝好或蓋好。不同批號的試劑不要混用。保質前使用。
6．底物B對光敏感，避免長時間暴露于光下。

洗板方法
手工洗板方法：甩掉酶標板內的液體；在實驗臺上鋪墊幾層吸水紙，酶標板朝下用力拍幾次；將稀釋后的洗滌液至少0.35ml注入孔內，浸泡1-2分鐘。根據需要，重復此過程數次。

自動洗板：如果有自動洗板機，應在熟練使用后再用到正式實驗過程中
標本要求
1．不能檢測含NaN3的樣品，因NaN3抑制辣根過氧化物酶的（HRP）活性。
2．標本采集后盡早進行提取，提取按相關文獻進行，提取后應盡快進行實驗。若不能馬上進行試驗，可將標本放于-20℃保存，但應避免反復凍融。
操作程序
1.標準品的稀釋：(本試劑盒提供原倍標準品一支，用戶可按照下列圖表在小試管中進行稀釋。)

2.根據待測樣品數量加上標準品的數量決定所需的板條數。每個標準品和空白孔建議做復孔。每個樣品根據自己的數量來定，能使用復孔的盡量做復孔。
3.加樣：1）空白孔，空白對照孔不加樣品，生物素標記的抗MTL抗體，鏈霉親和素-HRP，只加顯色劑A&B和終止液，其余各步操作相同；2）標準品孔：加入標準品50ul，鏈霉親和素-HRP50ul(標準品中已事先整合好生物素抗體，故不加)；3）待測樣品孔：加入樣本40ul，然后各加入抗MTL抗體10ul、鏈霉親和素-HRP50ul，蓋上封板膜，輕輕震蕩混勻，37℃溫育60分鐘。
4.配液：將30倍濃縮洗滌液用蒸餾水30倍稀釋后備用。
5.洗滌：小心揭掉封板膜，棄去液體，甩干，每孔加滿洗滌液，靜置30秒后棄去，如此重復5次，拍干。
6.顯色：每孔先加入顯色劑A50ul，再加入顯色劑B50μl，輕輕震蕩混勻，37℃避光顯色15分鐘.
7.終止：每孔加終止液50μl，終止反應（此時藍色立轉黃色）。
8.測定：以空白空調零，450nm波長依序測量各孔的吸光度（OD值）。 測定應在加終止液后10分鐘以內進行。
9.根據標準品的濃度及對應的OD值計算出標準曲線的直線回歸方程，再根據樣品的OD值在回歸方程上計算出對應的樣品濃度。也可以使用各種應用軟件來計算。

操作程序總結：

1.準備試劑，樣品和標準品

2.加入準備好的樣品和標準品，生物素標記的二抗和酶標試劑，37℃反應60分鐘

3.洗板5次，加入顯色液A、B，37℃顯色15分鐘

4.加入終止液

5.10分鐘內讀OD值

6.計算

試劑盒性能：
1.樣品線性回歸與預期濃度相關系數R值為0.92以上。
2.批內與批間應分別小于9%和15%

檢測范圍：
檢測范圍：20pg/ml-480pg/ml

保存條件及有效期：
保存：2-8℃。
有效期：6個月(2-8℃)。