實時定量 PCR 是一種使用熒光化學物質測量 DNA 擴增反應中每個聚合酶鏈式反應 (PCR) 循環后產物總量的方法。通過內參或外參方法對待測樣品中特定DNA序列進行定量分析的方法。

實時PCR是在PCR擴增過程中通過熒光信號實時檢測PCR過程。由于在PCR擴增的指數期內，模板的Ct值與模板的初始拷貝數之間存在線性關系，因此成為定量的依據。

PCR技術原理

所謂實時定量PCR技術是指在PCR反應體系中添加熒光基團，利用熒光信號的積累實時監測整個PCR過程，最后通過標準品對未知模板進行定量分析的方法。曲線。

檢測方法

1. SYBR Green I 方法：

PCR反應體系中加入過量的SYBR熒光染料。 SYBR熒光染料特異性摻入DNA雙鏈后，發出熒光信號，而未摻入鏈中的SYBR染料分子不會發出任何熒光信號，從而保證了熒光信號的增加全同步隨著PCR產物的增加。

2.TaqMan探針法：

當探針完整時，報告基團發出的熒光信號被猝滅基團吸收；在 PCR 擴增過程中，Taq 酶的 5'-3' 核酸外切酶活性裂解并降解探針，形成報告熒光團和猝滅基團。將熒光基團分開，使熒光監測系統能夠接收到熒光信號，即每擴增一條DNA鏈，就形成一個熒光分子，熒光信號的積累與DNA鏈的形成全同步。 PCR 產物。

技術原理

熒光素標記的Taqman探針與模板DNA混合后，完成高溫變性、低溫復性、適宜溫度延伸的熱循環，根據模板DNA互補的Taqman探針被切斷聚合酶鏈反應定律。熒光素在反應體系中呈游離態，在特定光激發下發出熒光。隨著循環次數的增加，擴增的目的基因片段呈指數增長。通過實時檢測隨擴增變化而變化的相應熒光信號強度，獲得Ct值，同時以已知模板濃度的幾種標準品作為對照，計算樣品中目的基因的拷貝數可以得到待測試的。

CT值

Ct值（Cycle Threshold，循環閾值）的含義是：每個反應管內熒光信號達到設定閾值時所經歷的循環次數

1. 熒光閾值（threshold）設置

PCR反應的前15個循環的熒光信號作為熒光背景信號，熒光閾值默認（default）設置為第3-15個循環的熒光信號標準差的10倍，即：閾值 = 10*SDcycle 3- 15

2. Ct值與起始模板的關系

每個模板的Ct值與模板初始拷貝數的對數呈線性關系，公式如下。
Ct=-1/lg(1+Ex)*lgX0+lgN/lg(1+Ex) 初始拷貝數越高，Ct 值越低。使用已知初始拷貝數的標準品可以制作標準曲線，其中橫坐標表示初始拷貝數的對數，縱坐標表示Ct值。因此，只要獲得未知樣品的Ct值，就可以從標準曲線計算出該樣品的起始拷貝數。
n為擴增反應的循環數，X0為初始模板量，Ex為擴增效率，N為當熒光擴增信號達到閾值強度時擴增產物的量。

熒光化學品

實時定量PCR中使用的熒光物質可分為熒光探針和熒光染料兩類。原理簡述如下：
1. TaqMan熒光探針：在PCR擴增過程中，隨一對引物一起添加特異性熒光探針。探針是寡核苷酸，兩端都標記有報告熒光基團和猝滅劑。熒光團。當探針完整時，報告基團發出的熒光信號被猝滅基團吸收；在 PCR 擴增過程中，Taq 酶的 5'-3' 核酸外切酶活性裂解并降解探針，形成報告熒光團和猝滅基團。熒光基團分離，使熒光監測系統能夠接收到熒光信號，即每擴增一條DNA鏈就形成一個熒光分子，熒光信號的積累與PCR的形成全同步產品。新型TaqMan-MGB探針使該技術能夠同時進行定量基因分析和基因突變（SNP）分析，有望成為基因診斷和個性化醫療分析的技術平臺。

2. SYBR熒光染料：在PCR反應體系中，加入過量的SYBR熒光染料，SYBR熒光染料非特異性摻入DNA雙鏈，并發出熒光信號，而未摻入DNA雙鏈的SYBR染料分子則發出熒光信號。鏈不會發射任何熒光。信號，從而保證熒光信號的增加與PCR產物的增加全同步。 SYBR 僅與雙鏈 DNA 結合，因此熔解曲線可用于確定 PCR 反應是否具有特異性。

3、分子信標：是一種莖環雙標記寡核苷酸探針，在5、3端形成約8個堿基的發夾結構。兩端的核酸序列互補配對，導致熒光團和猝滅基團非常接近并且不發出熒光。 PCR產物生成后，在退火過程中，分子信標的中間部分與特定的DNA序列配對，熒光基因和猝滅基因分離，產生熒光[1]。

傳統定量PCR

1. 傳統定量PCR方法介紹

1）內參法：將定量的內標和引物加入到不同的PCR反應管中，通過基因工程方法合成內標。上游引物有熒光標記，下游引物沒有熒光標記。在擴增模板的同時，內標也被擴增。 PCR產物中，由于內標和目標模板的長度不同，可以通過電泳或高效液相分離兩者的擴增產物，并分別測定它們的熒光強度，內標可以用作定量待檢測模板的對照。
2）競爭法：選擇含有突變克隆產生的新內切酶位點的外源競爭模板。在同一反應管中，用同一對引物（其中一個引物帶有熒光標記）同時擴增待測樣品和競爭模板。擴增后，PCR產物用核酸內切酶消化，競爭模板的產物被消化成兩個片段，而待測模板則不被酶切。可以通過電泳或高效液相分離兩種產物，并可以單獨測量熒光強度，根據已知模板推斷未知模板的初始拷貝數。
3）PCR-ELISA法：利用di高辛或生物素等標記引物，將擴增產物與固相板上的特異性探針結合，然后加入抗di高辛或生物素酶標抗體-辣根過氧化反應。底物酶結合，最后酶使底物顯色。常規的PCR-ELISA方法只是定性實驗。若加入內標物制作標準曲線，也可達到定量檢測的目的。

2. 內標在傳統定量中的作用

由于傳統的定量方法是終點檢測，即PCR到達平臺期后進行檢測，而當PCR通過對數期擴增到達平臺期時，檢測重現性極差。同一個模板在96孔PCR機上重復96次，得到的結果相差很大，因此無法直接從終產物的量計算出起始模板的量。通過添加內標可以部分消除最終產品定量造成的誤差。但即便如此，傳統的定量方法也只能算是半定量和粗略的定量方法。

3.內標對定量PCR的影響

如果在待測樣品中加入初始拷貝數已知的內標，則PCR反應變成雙PCR，雙PCR反應中兩個模板之間存在干擾和競爭，特別是當內標的初始拷貝數為已知的內標時。兩個模板差異比較大的時候，這種競爭就會更加顯著。但由于待測樣品的初始拷貝數未知，因此無法添加適量的已知模板作為內標。也正是因為這個原因，傳統的定量方法雖然增加了內標，但仍然只是一種半定量方法。

實時定量PCR

實時熒光定量PCR技術有效解決了傳統定量僅終點檢測的局限性，實現每個循環檢測一次熒光信號強度，并記錄在計算機軟件中，通過計算Ct值對每個樣品，根據標準曲線獲得定量結果。因此，無內標實時定量PCR基于兩個基礎：
1）Ct值的重現性 當PCR循環達到Ct值所在的循環數時，剛剛進入真正的指數擴增階段（對數階段）。此時，微小的誤差還沒有被放大，因此Ct值的重現性好。 ，即同一個模板在不同時間擴增或者在不同管中同時擴增，得到的Ct值是恒定的。
2）Ct值與起始模板的線性關系 由于Ct值與起始模板的對數之間存在線性關系，因此可以利用標準曲線來定量測定未知樣品。因此，實時熒光定量PCR是一種利用外標曲線的定量方法。方法。
與內標法相比，外標曲線定量法是一種準確、可靠的科學方法。使用外標曲線的實時熒光定量PCR是迄今為止最準確、重現性好的定量方法。已得到世界的認可，廣泛應用于基因表達研究、轉基因研究、藥效評估、病原檢測等領域。

實時熒光定量PCR的定量方法

在實時PCR中，模板定量有兩種策略：相對定量和絕對定量。

實時熒光定量PCR相關應用

臨床疾病診斷

各類肝炎、艾滋病、流感、肺結核、性病等傳染病的診斷及療效評價；地中海貧血、血友病、性別發育不良、智力低下綜合征、胎兒畸形的優生學和產前檢查；腫瘤標志物和腫瘤基因檢測實現腫瘤疾病的診斷；基因檢測實現了遺傳病的診斷。

動物疫病檢測

流感、新城疫、口蹄疫、豬瘟、沙門氏菌、大腸桿菌、胸膜肺炎放線桿菌、寄生蟲病等、炭疽桿菌。

食品安全

乳制品企業中食品源性微生物、食品過敏原、轉基因生物、坂崎腸桿菌的檢測。

科學研究

與醫學、農牧業、生物學相關的分子生物學定量研究。

應用行業

各級各類醫療機構、大專院校及科研院所、疾控中心、檢驗檢疫局、獸醫站、食品企業及乳品廠等。由于qPCR是病原基因核酸的實時定量檢測，因此
具有更多的特性。與化學發光、時間分辨率、蛋白芯片等免疫學方法相比具有優勢。